在实验室的培养箱中,藏着两类性格迥异的“住户”:一类偏爱 “安家落户”,紧紧贴附在容器表面舒展生长,是细胞界的「安居派」;另一类则习惯 “随波逐流”,在培养液中自由悬浮,堪称「漂流族」。它们就是贴壁细胞与悬浮细胞
—— 看似只是生长方式不同,实则在生物学特性、培养逻辑和应用场景上有着天壤之别。本文将深入剖析这些差异,并分享那些在日常培养中至关重要却又容易被忽视的细节。


本质差异:为何有的“安家” 有的 “漂流”?
细胞的“生活方式”,并非培养箱决定,而是它在体内命运的延续—有的注定依附基质而生,有的天生漂浮于液体之中
贴壁细胞:基质依赖的“定居者”。
这类细胞多来源于实体组织,比如成纤维细胞、肝细胞,甚至乳腺癌、肺癌等肿瘤细胞。它们在体内就附着在细胞外基质(ECM,如胶原蛋白、纤连蛋白)上生长,离体后仍保留“黏附本能”——必须贴附在经特殊处理的培养容器表面,才能伸展成梭型、扇形等形态,进而增殖。其黏附过程需要通过整合素(Integrins)与细胞骨架(主要是F-actin)相连,形成黏附斑(Focal adhesion),进一步触发FAK、PI3K/Akt等信号通路维持存活。失去黏附后,这些信号中断,会诱发所谓“失巢凋亡”(Anoikis)

失巢凋亡的途径
来源:J Pathol:Anoikis: an emerging hallmark in health and diseases
悬浮细胞:无拘无束的“流浪者”
主要来自血液、脾脏或骨髓,比如淋巴细胞、白血病细胞等。它们不依赖基底附着,而是依靠自分泌或旁分泌的细胞因子(如IL-2、IL-7)或细胞间短暂接触维持存活。悬浮体系中的信号传递更像“群体协作”,通过表面受体和局部因子交流,形成一种漂浮但有序的动态平衡。
操作雷区:传代到监测,步步惊心的关键差异
两类细胞的“生活习惯” 不同,实验室操作逻辑也截然不同,堪称细胞培养的 “新手分水岭”


从新手到高手:提升细胞状态不可不知的细节
贴壁细胞:消化是艺术,亦是科学
被忽视点:消化终点的判断
误区:严格按时间表操作
建议:不同细胞系胰酶消化时间差异大(如293T细胞1分钟,HeLa细胞3分钟),新手易按固定时间操作,导致部分细胞消化过度(细胞膜破损)、部分未消化(贴壁牢固)。正确做法是37℃孵育时,每30秒在显微镜下观察,待80%细胞变圆即可终止。
被忽视点:细胞吹打的力度与技巧
误区:暴力吹打以求高效
建议:使用口径适中的移液管,让培养基沿培养瓶壁流下,轻柔反复吹打。目标是产生温和的剪切力使细胞脱落并分散成单细胞,而非撕裂细胞。吹打后溶液应轻微浑浊但无泡沫。



悬浮细胞:稳态生长重于一切
被忽视点:代谢废物的累积
误区:只关注细胞密度,忽视培养基营养耗尽和代谢废物(如乳酸、铵离子)的毒性
建议:悬浮细胞因代谢快,培养基易积累废物,需1-2 天换一次液,或通过半换液(更换一半新鲜培养基)维持营养平衡。
被忽视点:细胞团块的处理
误区:强行吹散所有细胞团块
建议:小的、松散的细胞团(<10个细胞)对生长影响不大,有时甚至有利于某些细胞的生长。强行吹散会损伤细胞。仅需处理大的、紧密的团块,可通过使用细胞筛网或更温和的吹打方式。
被忽视点:死细胞的处理
误区:以为死细胞自己会消失
建议:悬浮细胞培养中死细胞较多时,可通过多种方法去除:最常用的是低速离心(300×g,5 min,室温),弃去上清并以新鲜培养基重悬;若有大量碎片或DNA黏团,可加入少量EDTA和DNase I短暂处理后再洗涤。需要更高纯度时,可采用Ficoll或Percoll密度梯度离心分离,或使用Annexin V磁珠去死细胞试剂盒去除凋亡细胞;若用于后续功能实验或单细胞测序,可通过流式细胞术结合PI/7-AAD排除死细胞。实际应用中应同时检查死亡原因并优化培养条件,防止持续性细胞损伤
通用关键点:冻存与复苏
被忽视点:冻存细胞的状态。
误区:在任何时期都可以冻存。
建议:冻存前应确保细胞处于对数生长期、活率>95%。此时细胞膜完整、代谢旺盛,抗冻保护剂渗透均匀。若在平台期或状态不佳时冻存(如密度过高、营养耗尽)甚至有污染时冻存,则复苏后常出现贴壁困难、分裂迟缓或活率骤降。换言之,细胞的“临终时刻”并非保存的好时机。
被忽视点:复苏的速度。
误区:复苏时慢速化冻。
建议:细胞复苏遵循“慢冻快融”原则。贴壁细胞冻存液中DMSO浓度宜为10%–20%,悬浮细胞为5%–10%。快速在37℃水浴中1分钟内完全融化,可避免冰晶在膜内重结晶造成机械损伤。切记:融化后应立即以培养基稀释并离心去除DMSO,否则其穿膜性毒性会持续损伤细胞。
没有“优劣”,只有 “适配”
贴壁细胞的“安居” 与悬浮细胞的 “漂流”,本质是细胞对生存环境的适应策略。下次培养细胞时,不妨对照这份指南检查每一步操作-或许你忽略的某个小细节,正是解锁实验难题的关键。
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